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實驗原理
由于RNA的來源和種類很多，因此提取方法各異，一般有苯酚法、去污劑法、和鹽酸胍法。其中苯酚法是實驗室zui常用的。組織勻漿用苯酚處理并離心后，RNA即溶于上層被苯酚飽和的水相中。DNA和蛋白質(zhì)則留在酚層中。向水層加入乙醇后，RNA即以白色絮狀沉淀析出，此法能較好地除去DNA及蛋白質(zhì)，提取的RNA具有生物活性。
工業(yè)上制備RNA多選用成本低，適于大規(guī)模操作的稀堿法及濃鹽酸。用發(fā)酵工業(yè)的下腳料如酵母、白地酶如青霉菌菌絲體登提取RNA，其得率常為菌種重量的3%~5%。而DNA含量僅為0.03%~0.52%，因此提取RNA多以酵母為原料。稀堿法是用氫氧化鈉溶液，使細菌細胞壁變性，濃鹽法是用高濃度鹽溶液處理，同時加熱，以改變細胞壁的通透性，使核酸從細胞內(nèi)釋放出來。用稀堿法使酵母細胞裂解后，用酸中和，然后除去菌體，使乙醇沉淀上清液中的RNA或?qū)H值調(diào)至RNA的等電點，是蛋白質(zhì)沉淀出來。
RNA是生物高分子化合物，進一步水解可生成磷酸、戊糖和堿基。各種組分可用于下述方法鑒定：
1.磷酸于鉬酸銨試劑作用能產(chǎn)生黃色的磷鉬酸銨沉淀。
2.核糖與地衣酚試劑反應(yīng)呈鮮綠色。
3.嘌呤堿與硝酸銀產(chǎn)生白色的嘌呤銀化合物沉淀。
實驗方法
1.酵母RNA提取：
（1）稱4g干酵母粉置于100ml燒杯中，加入40ml0.2%氫氧化鈉溶液，沸水浴上加熱30分鐘，不斷攪拌。
（2）加入數(shù)滴乙酸溶液使提取液呈酸性，4000r/min，離心10~15分鐘。
（3）取上清液，加入30ml 95%乙醇洗2次，每次用10ml。
（4）用無水乙醇洗兩次，每次10ml，洗滌時可用小玻棒小心攪動沉淀。
（5）用布氏漏斗抽濾，沉淀在空氣中干燥。
（6）稱量所得RNA樣品重量，計算得率。
2.RNA組分鑒定：
（1）水解RNA：像錐形瓶中加入少量（0.1~0.2g）酵母RNA個10%硫酸溶液15ml，在瓶口上插一玻璃小漏斗，漏斗上蓋上表面皿，然后在沸水浴中加熱水解約30分鐘，過濾，取濾液進行下列實驗。
（2）嘌呤堿基的檢查：取試管一支，加入1ml 0.1mol/L硝酸銀溶液，再逐滴加1mol/L氨水至沉淀消失。然后加入1ml濾液，放置片刻，觀察有無嘌呤堿基的銀化合物沉淀產(chǎn)生。
（3）磷酸的檢查：取2ml濾液放入1支試管中，加入5滴硝酸銀和1ml鉬酸銨溶液后，在沸水中加熱，觀察有無黃色磷鉬酸銨沉淀產(chǎn)生。
（4）戊糖的檢查：取一支試管，加入1ml濾液，然后加入2ml地衣酚試劑，搖勻后在沸水浴上加熱10~15分鐘，觀察顏色的變化。
注意事項
1.稀堿法提取的RNA為變性RNA，可用于RNA組分鑒定及單核苷酸制備，不能作為RNA生物活性實驗材料。
2.脫氧核糖及核糖均可與地衣酚反應(yīng)。因此地衣酚試驗不能作為RNA與DNA鑒定的依據(jù)。
